RU EN

Меню страницы:

Публикации 2020 года

Ключевые слова:
береза, органы, ткани, низкие температуры, устойчивость, многолетняя мерзлота, Якутия
Страницы:
21–30

Реферат

УДК 574*24

Татаринова Т. Д., Перк А. А., Пономарев А. Г., Васильева И. В. Особенности стрессовых белков-дегидринов березы Betula L. в условиях криолитозоны // Сибирский лесной журнал. 2020. № 2. С. 21–30.

DOI: 10.15372/SJFS20200203

© Татаринова Т. Д., Перк А. А., Пономарев А. Г., Васильева И. В., 2020

С использованием специфических антител исследованы особенности состава стрессовых белков-дегидринов некоторых видов рода Betula L.: береза повислая B. pendula Roth, береза кустарниковая B. fruticosa Pall., береза карликовая B. nana L., произрастающих в условиях экстремального климата криолитозоны Центральной Якутии. Для сравнения изучали состав дегидринов березы повислой из регионов, отличающихся более умеренными климатическими показателями (Южная Якутия и Прибайкалье). Показано, что у разных видов березы в условиях криолитозоны выявлено значительное сходство состава дегидринов. Независимо от видовых особенностей березы, из двух групп идентифицированных дегидринов в диапазоне молекулярной массы 15-21 и 56-73 кДа, наибольшим сезонным изменениям подвержены низкомолекулярные дегидрины, преимущественно 17 кДа. Высокий уровень этих белков в побегах и почках, а также в тканях ксилемы и коры березы повислой, выявлялся в период зимнего покоя, когда морозоустойчивость растений достигала максимальных значений при наиболее низких отрицательных температурах, тогда как в летний период они практически исчезали. Дегидрины в области 15-21 кДа в побегах и почках березы в условиях Центральной Якутии характеризовались более выраженным внутривидовым полиморфизмом, их содержание, в первую очередь 17 кДа дегидрина, заметно превышало таковое у деревьев южно-якутской и иркутской популяций. Среднемолекулярные дегидрины березы 66-69 кДа представлены круглогодично почти на одном уровне. Данные дегидрины в листьях, мужских соцветиях, пыльце и проростках из семян березы повислой наблюдались во время вегетации, хотя и обнаруживались в меньшем количестве. Значительное сходство состава и представленность дегидринов в органах и тканях изученных популяций березы могут указывать на их важную роль в общих механизмах формирования низкотемпературной устойчивости растений рода Betula L. к условиям Северо-Востока Евразии.

Текст статьи


СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ (REFERENCES)

Аллагулова Ч. Р., Гималов Ф. Р., Шакирова Ф. М., Вахитов В. А. Дегидрины растений: их структура и предполагаемые функции // Биохимия. 2003. Т. 68. № 9. С. 1157–1165 [Allagulova Ch. R., Gimalov F. R., Shakirova F. M., Vakhitov V. A. Degidriny rasteniy: ikh struktura i predpolagayemye funktsii (The plant dehydrins: structure and putative functions) // Biokhimiya (Biochemistry). 2003. V. 68. N. 9. P. 1157–1165 (in Russian with English abstract)].

Бубякина В. В., Татаринова Т. Д., Пономарев А. Г., Перк А. А., Соломонов Н. Г. Особенности сезонной динамики дегидринов Betula platyphylla Sukacz., ассоциированные с формированием морозоустойчивости в условиях криолитозоны // ДАН. 2011. Т. 439. № 6. С. 844–847 [Bubyakina V. V., Tatarinova T. D., Ponomarev A. G., Perk A. A., Solomonov N. G. Osobennosti sezonnoy dinamiki degidrinov Betula platyphylla Sukacz., assotsiirovannye s formirovaniem morozoustoychivosti v usloviyakh kriolitozony (Characteristics of seasonal dynamics of Betula platyphylla Sukacz. dehydrins associated with frost hardiness development under the cryolitic zone conditions) // DAN (Rep. Acad. Sci.). 2011. V. 439. N. 6. Р. 844–847 (in Russian with English abstract)].

Всероссийский НИИ гидрометеорологической информации – Мировой центр данных, 2019.

Коропачинский И. Ю. Древесные растения Сибири // Новосибирск: Наука, 1983. 284 с [Koropachinskiy I. Yu. Drevesnye rasteniya Sibiri (Woody plants of Siberia) // Novosibirsk: Nauka, 1983. 284 р (in Russian)].

Погода и климат, 2019.

Пономарев А. Г., Татаринова Т. Д., Перк А. А., Васильева И. В., Бубякина В. В. Дегидрины, ассоциированные с формированием морозоустойчивости березы плосколистной // Физиол. раст. 2014. Т. 61. № 1. С. 114–120 [Ponomarev A. G., Tatarinova T. D., Perk A. A., Vasilyeva I. V., Bubyakina V. V. Degidriny, assotsiirovannye s formirovaniyem morozoustoychivosti berezy ploskolistnoy (Dehydrins associated with the development of frost resistance of Asian white birch) // Fiziologiya rasteniy (Phisiol. Plants). 2014. V. 61. N. 1. Р. 114–120 (in Russian with English abstract)].

Татаринова Т. Д., Бубякина В. В., Ветчинникова Л. В., Перк А. А., Пономарев А. Г., Васильева И. В. Стрессовые белки-дегидрины в почках березы в контрастных по климату регионах // Цитология. 2017. Т. 59. № 2. С. 156–160 [Tatarinova T. D., Bubyakina V. V., Vetchinnikova L. V., Perk A. A., Ponomarev A. G., Vasilieva I. V. Stressovye belki-degidriny v pochkakh berezy v kontrastnykh po klimatu regionakh (Dehydrin stress proteins in birch buds in regions with contrasting climate) // Tsitologiya (Cytology). 2017. V. 59. N. 2. Р. 156–160 (in Russian with English abstract)].

Тимофеев П. А. Деревья и кустарники Якутии. Якутск: Бичик, 2003. 59 с [Timofeyev P. A. Derevya i kustarniki Yakutii (Trees and shrubs of Yakutia). Yakutsk: Bichik, 2003. 59 р. (in Russian)].

Allagulova Ch. R., Gimalov F. R., Shakirova F. M., Vakhitov V. A. The plant dehydrins: structure and putative functions // Biochemistry. 2003. V. 68. Iss. 9. P. 945–951 (Original Rus. text © Ch. R. Allagulova, F. R. Gimalov, F. M. Shakirova, V. A. Vakhitov, 2003, publ. in Biokhimiya. 2003. V. 68. N. 9. P. 1157–1165).

Bradford M. M. A Rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. V. 72. Р. 248–254.

Bubyakina V. V., Tatarinova T. D., Ponomarev A. G., Perk A. A., Solomonov N. G. Characteristics of seasonal dynamics of Betula platyphylla Sukacz. dehydrins associated with frost hardiness development under the cryolitic zone conditions // Dokl. Biol. Sci. 2011. V. 439. Iss. 1. Article 258 (Original Rus. text © V. V. Bubyakina, T. D. Tatarinova, A. G. Ponomarev, A. A. Perk, N. G. Solomonov, 2011, publ. in Doklady Akademii Nauk. 2011. V. 439. N. 6. P. 844–847).

Chang C. Y., Frechette E., Unda F., Mansfield S. D., Ensminger I. Elevated temperature and CO2 stimulate late-season photosynthesis but impair cold hardening in pine // Plant Physiol. 2016. V. 172. P. 802–818.

Close T. J. Dehydrins: emergence of a biochemical role of a family of plant dehydration proteins // Physiol. Plant. 1996. V. 97. Iss. 4. P. 795–803.

Cuevas-Velazquez C. L., Rendоn-Luna D. F., Covarrubias A. A. Dissecting the cryoprotection mechanisms for dehydrins // Front. Plant Sci. 2014. V. 5. P. 1–6.

Eriksson S. K., Kutzer M., Procek J., Gröbner G., Harryson P. Tunable membrane binding of the intrinsically disordered dehydrin Lti30, a cold-induced plant stress protein // The Plant Cell. 2011. V. 23. P. 2391–2404.

Fujikawa S., Ukaji N., Nagao M. Yamane K., Takezawa D., Arakawa K. Functional role of winter-accumulating proteins from mulberry tree in adaptation to winter-induced stresses. Cold Hardiness in Plants: Mol. Gen., Cell Biol. and Physiol., 2006. P. 181–202.

Hanin M., Brini F., Ebel C., Toda Y., Takeda S. Masmoudi K. Plant dehydrins and stress tolerance: versatile proteins for complex mechanisms // Plant Signal. Behav. 2011. V. 6 (10). P. 1503–1509.

Hara M., Terashima S., Kuboi T. Characterization and cryoprotective activity of cold-responsive dehydrin from Citrus unshiu // J. Plant Physiol. 2001. V. 158. P. 1333–1339.

Karlson D. T., Zeng Y., Stirm V. E., Joly R. J., Ashworth E. N. Photoperiodic regulation of a 24-kD dehydrin-like protein in red-osier dogwood (Cornus sericea L.) in relation to freeze-tolerance // Plant. Cell. Physiol. 2003. V. 44. P. 25–34.

Kjellsen T. D., Yakovlev I. A., Fossdal C. G., Strimbeck G. R. Dehydrin accumulation and extreme low-temperature tolerance in Siberian spruce (Picea obovata) // Tree Physiol. 2013. V. 33. Iss. 12. P. 1354–1366.

Korotaeva N. E., Oskorbina M. V., Kopytova L. D., Suvorova G. G., Borovskii G. B., Voinikov V. K. Variations in the content of stress proteins in the needles of common pine (Pinus sylvestris L.) within an annual cycle // J. For. Res. 2012. V. 17. N. 1. P. 89–97.

Kosova K., Prasil I. T., Vitamvas P. Role of dehydrins in plant stress response. Handbook of Plant and Crop Stress. Tucson: CRC, 2010. P. 239–285.

Laemmli U. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 // Nature. 1970. V. 227. P. 680–685.

Malik A. A., Veltri M. A., Boddington K. F., Singh K., Graether S. P. Genome analysis of conserved dehydrin motifs in vascular plants // Front. Plant Sci. 2017. V. 8. P. 1–18.

Peng Y., Reyes J. L., Wei H., Yang Y., Karlson D., Covarrubias A .A., Krebs S. L., Fessehaie A., Arora R. RcDhn5, a cold acclimation-responsive dehydrin from Rhododendron catawbiense rescues enzyme activity from dehydration effects in vitro and enhances freezing tolerance in RcDhn5-overexpressing Arabidopsis plants // Physiol. Plant. 2008. V. 134. P. 583–597.

Ponomarev A. G., Tatarinova T. D., Perk A. A., Vasilyeva I. V., Bubyakina V. V. Dehydrins associated with the development of frost resistance of Asian white birch // Rus. J Plant Physiol. 2014. V. 61. Iss. 1. P. 105–111 (Original Rus. text © A. G. Ponomarev, T. D. Tatarinova, A. A. Perk, I. V. Vasilieva, V. V. Bubyakina, 2014, publ. in Fiziologiya Rastenii. 2014. V. 61. N. 1. P. 114–120.

Puhakainen T., Hess M. W., Mäkelä P., Svensson J., Heino P., Palva E. T. Overexpression of multiple dehydrin genes enhances tolerance to freezing stress in Arabidopsis // Plant Mol. Biol. 2004. V. 54. Iss. 5. P. 743–753.

Rinne P., Welling A., Kaikuranta P. Onset of freezing tolerance in birch (Betula pubescens Ehrh.) involves LEA proteins and osmoregulation and is impaired in an ABA-deficient genotype // Plant Cell Environ. 1998. V. 21. P. 601–611.

Rorat T. Plant dehydrins-tissue location, structure and function // Cell. Mol. Biol. Lett. 2006. V. 11. Iss. 4. P. 536–556.

Sarnighausen E., Karlson D., Ashworth E. Seasonal regulation of a 24-kDa protein from red-osier dogwood (Cornus sericea) xylem // Tree Physiol. 2002. V. 22. P. 423–430.

Sena J. S., Giguère I., Rigault P., Bousquet J., Mackay J. J. Expansion of the dehydrin gene family in the Pinaceae is associated with considerable structural diversity and drought-responsive expression // Tree Physiol. 2018. V. 38. Iss. 3. P. 442–456.

Strimbeck G. R., Schaberg P. G., Fossdal C. G., Schroder W. P., Kjellsen T. D. Extreme low temperature tolerance in woody plants // Front. Plant Sci. 2015. V. 6. P. 1–15.

Svensson J., Ismail A. M., Palva E. T., Close T. J. Dehydrins // Cell and molecular responses to stress. Book Ser. Amsterdam, Netherlands: Elsevier Press, 2002. V. 3. P. 155–171.

Takata N., Kasuga J., Takezawa D., Arakawa K., Fujikawa S. Gene expression associated with increased supercooling capability in xylem parenchyma cells of larch (Larix kaempferi) // J. Exp. Bot. 2007. V. 58. №. 13. P. 3731–3742.

Tatarinova T. D., Bubyakina V. V., Vetchinnikova L. V., Perk A. A., Ponomarev A. G., Vasilieva I. V. Dehydrin stress proteins in birch buds in regions with contrasting climate // Cell Tiss. Biol. 2017. V. 11. Iss. 6. P. 483–488 (Original Rus. text © T. D. Tatarinova, V. V. Bubyakina, L. V. Vetchinnikova, A. A. Perk, A. G. Ponomarev, I. V. Vasilieva, 2017, publ. in Tsitologiya. 2017. V. 59. N. 2. P. 156–160).

Timmons T. M., Dunbar B. S. Protein blotting and immunodetection // Methods enzymol. 1990. V. 182. P. 679–688.

Weather Underground, 2019.

Welling A., Palva E. T. Molecular control of cold acclimation in trees // Physiol. Plant. 2006. V. 127. Iss. 2. P. 167–181.

Welling A., Palva E. T. Involvement of CBF transcription factors in winter hardiness in birch // Plant Physiol. 2008. V. 147. P. 1199–1211.

Welling A., Rinne P., Vihera-Aarnio A., Kontunen-Soppela S., Heino P., Palva E. T. Photoperiod and temperature differentially regulate the expression of two dehydrin genes during overwintering of birch (Betula pubescens Ehrh.) // J. Exp. Bot. 2004. V. 55. P. 507–516.


Вернуться к списку статей